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蛋白电泳分离胶浓度的选择
蛋白质电泳的分离胶浓度
,我要跑的蛋白质有120KD的,还有90几KD的,该...
答:
6%-10%,浓度太低了胶会很容易破的,建议用8%比较好
。 7.5%不好计算,呵呵。 注意选择好合适的marker哦。
biorad
蛋白电泳
多少
分离胶
答:
biorad蛋白电泳分离胶浓度为百分之14至百分之16
。biorad蛋白电泳分离胶是一种阴离子去污剂,可使蛋白质变性并将每个多肽链展开成线性方向。蛋白质或核酸在电泳过程中由浓缩胶进入分离胶,由于分子筛作用,小分子的物质容易通过,阻力小,迁移速度快;大分子的则受到较大的阻力而被滞后。
sas-page
浓度
答:
问题应该是sds-page电泳时蛋白样品的浓度需要多大合适吧,
分离胶浓度的选择主要取决于目的蛋白的分子量大小
,不同的分离胶浓度对不同的目的蛋白分子量的分辨率不一样。下层胶):不同浓度的SDS-PAGE分离胶的最佳分离范围:SDS-PAGE分离胶浓度,最佳分离范围:6%胶,50-150kD 8%胶,30-90kD 10%胶,20...
您好,关于【
蛋白质
SDS-PAGE
电泳分离胶
和浓缩
胶的浓度
如何确定?上样缓冲...
答:
积层胶12%,分离胶6%
,上样缓冲液4
做
蛋白电泳
时,在不知道蛋白样品分子量的情况下如何
选择分离胶的浓度
答:
不知道分子量的情况下就尽可能
选择浓度
高的分离胶,因为浓度低的胶很有可能蛋白就跑出去了。先用高浓度的胶跑一次,然后看条带再调整下
分离胶浓度
再做一次就行了。另外,一般快速测定
蛋白浓度的
方法就是用分光光度计测量A280的吸光度,然后按照小牛血清蛋白(BSA)作标准曲线初步评估蛋白浓度。BSA在A280...
8KDa
蛋白
在SDS-PAGE
电泳
时
分离胶的浓度
该
选择
多大
答:
200 12.5 14—100 15 14—60 浓缩胶浓度低;
分离胶浓度
高于浓缩胶,一般不小于5%。8KD的
蛋白质
可能就要用Tricine–SDS-PAGE系统,因为浓缩胶和分离胶浓度太大,
电泳
速度很忙,很可能引起电泳带弥散。
分离
42和55之间的
蛋白
用多少
浓度的胶
比较好
答:
一般凝胶浓度低是容易出现条带模糊的情况。个人手法是:用好点的材料制备凝胶来进行分析。10%的浓度可以用来分离这两种
蛋白
,将
电泳
电压在后半程调高可改善条带清晰度。也可以调高
分离胶浓度
至12%,但差别会较10%的更小。是在不行可以考虑用梯度胶分。“用好点的材料”是说的丙烯酰胺和甲叉。“将...
【请问】怎样根据
蛋白质
大小确定SDS-PAGE
电泳分离胶的浓度
?_百度...
答:
你可以用12%的
胶浓度
,如果marker是fermentas家的SDS非预染marker(批号SM0431)的话,可以看到116kd 66.2kd 45kd 35kd 25kd 18.4kd 14.4kd,这样你的目的条带20kd就差不多在整块胶的中间
怎样根据
蛋白质
大小确定SDS-PAGE
电泳分离胶的浓度
答:
按的是你丙烯酰胺和双丙烯酰胺的总质量 与
胶
总体积 的质量体积比(m/V)首先你要将上述药品粉末按照19:1或29:1的比例用水配置成母液(一般为30%,也是m/V)而10%,12%,16%你自然也就知道应该用多少的母液去配制了.相信如何配胶你是知道的....
蛋白质
跑
电泳
想让小分子量跑出去,我的蛋白分子量为170kda,用的10%的...
答:
首先你分离胶的浓度有点小问题,跑的时间较长就行了啦,只不过要自己估摸着。。。但是跑
蛋白
一般都要分两拨电压跑啊。。效果好点 (1)SDS-PAGE
分离胶浓度
--- 最佳分离范围 (KD)6%胶 --- ---50-150 8%胶 --- ---30-90 10%胶 ---20-80 12%胶 ---10-40 (2...
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