POD过氧化物酶活性(参考Chance等[11]的方法)
A. 酶液制备0.25g芽（剥除鳞片），加入0.0lg PVP, 5mL 0.lmol/L
磷酸盐缓冲液(pH7.8，含有0.2mmo1/L EDTA, 0.4mmo1/L β-巯基乙醇)冰浴研磨，低温(4℃).12000r/min离心10min后，所得上清液为待测液。
B. POD溶液制备：在50mL 100mmol/L pH7.0的磷酸盐缓冲液中加入19uL愈创木酚，加热搅拌，溶解冷却后加入28uL 30%的H2O2即为POD反应液，放到冰箱保存。
POD测定：酶液稀释10倍，取50uL待测液与2mL POD反应液和1mL 0.2mo1/L的
磷酸二氢钾溶液反应，用
紫外分光光度计于470nm处每隔30sec测其吸光值A470，重复3次求平均值，以△A470/min/gFW表示酶活大小。
SOD(
超氧化物歧化酶活性)的测定
试剂：
① 0.05mol/l磷酸缓冲液（PH值为7.8）。
②提取介质：50mmol/l PH值为7.8磷酸缓冲液（内含1％
聚乙烯吡咯烷酮）。
③130 mmol/l
甲硫氨酸（Met）溶液：称1.3991g Met，用磷酸缓冲溶液溶解并定容至100ml。
④750umol/l NBT：称取0.06133gNBT,用磷酸缓冲溶液溶解并定容至100ml，避光保存。
⑤200umol/l
核黄素溶液：遮光保存，随用随配。
参照王晶英等[82]的NBT还原法测定。取芽（剥除鳞片）0.25 g于预冷的研钵中，加2 mL预冷的提取介质。在冰浴下研磨成匀浆，加入提取介质冲洗研钵，并使终体积为5 mL，4℃下1000rpm离心15 min，上清液即为SOD粗提液。离心后取上清50 μL，加入1.5 mL磷酸缓冲液(0.05 mo/L)，0.3 mL甲硫氨酸溶液(130 mmol/L)，0.3 mL NBT溶液(750 μmol/L)，0.3 mL EDTA-Na2溶液(100 μmol/L)，30μL核黄素溶液（200 μmol/L），
蒸馏水520 μL。两个对照以缓冲液代替酶液，给1支对照管罩上比试管稍长的双层黑色硬纸套遮光，与其他各管同时置于4000 lx
日光灯下反应30 min。反应结束后，用黑布罩盖上试管，终止反应。以遮光的对照管作为空白，分别在560 nm波长下测定各管的
吸光度，计算SOD活性。
SOD活性(μ/g)＝(A0-As) ×Vt /(A0×0.5×m×Vs)
A0：照光对照光管的光吸收值；
As：样品管的光吸收值；
Vt：样液总体积(mL)；
Vs：测定时样品用量(mL)；
m：样品鲜重(g)。
这是我当时做的芽的实验方法，通用的